FL6000-serienDubbelmodulerad fluoresceringsmätare för klorofyl

FL6000-serienDubbelmodulerad klorofluorescensometer är den senaste uppgraderade versionen av FL3500 Dubbelmodulerad klorofluorescensometer, speciellt utformad för ett kraftfullt vetenskapligt verktyg för djupgående studier av mekanismerna för fotosyntes av mikroalger, kloroflor eller cystsuspensioner som blågröna eller gröna alger. Instrumentet har dubbelkanals mätkontroll för att kontrollera mätprovstemperaturen och är utrustat med en enda vändljus (STF), inbyggt i flera användare som kan ändra sina egna mätrutiner, kan genomföra olika fördjupade mekanismer för klorofluorescens internationella studier. Dess kärnstruktur är ett optiskt mäthuvud som innehåller en suspensionsstandardprovkoppel, 3 inbyggda LED-ljuskällor och en 1MHz/16-bitars AD-konverterad PIN-diodsignaldetektor. Vinst och kredittid för AD-konvertering kan styras av programvaran. Detektorn mäter klorofylfluorescenssignalen med en tidsupplösning på upp till 4 µs (snabb version 1 µs).

Tillämpningsområden:

·Växtfotosyntesegenskaper och screening av metaboliska störningar

·Detektering av biologisk och icke-biologisk tvång

·Växternas förmåga eller känslighetsstudier

·Forskning av metaboliskt kaos

·Arbetsmekanismen för fotosyntesiska system

·Forskning av strategier för fotofysiologisk reaktion på tvungen växt

Typiska prover:

·Blå alger (blå bakterier)

·Gröna alger

·Klorogröna suspensioner

·Cystsuspension

·Växtfragment

Funktioner:

·Inbyggd fluoresceringsinducerad mätning av klorofyl, PAM-mätning (pulsmodulation), OJIP-snabb fluoresceringsdynamisk mätning, QA-redoxideringsdynamik, S-tillståndsomvandling, klorofylfluoresceringssläckning och andra mätprogram är världens mest omfattande klorofylfluoresceringsinstrument.

·Dubbelmoduleringsteknik, tvåfärgmodulerad mätning av ljus, med modulerat fotokemiskt ljus och kontinuerligt fotokemiskt ljus, kan utföra STF (en omgående blixt), TTF (dubbel omgående blixt) och MTF (fleromgående blixt) och anpassad FRR-teknik (snabb repetitionshastighet)

·Tidsupplösning upp till 4 µs i standardversionen, snabb versionUpp till 1 µs, den högsta tidsupplösningen för klorofylfluorescenter för närvarande

·Kontrollenheten är dubbelkanal, kan ansluta temperatursensorer för temperaturkontroll, ansluta syremetningsenheter för Hill-reaktionsmätning etc.

·Hög känslighet med lägsta detektionsgräns på 100 ng Chla/L

·Mät ljus, ljus, mättad monoreflex ljuskälla färg, intensitet kan anpassas

·Värden är utrustad med färgskärm för att visa fluorescerande kurvor i realtid

Tekniska parametrar:

·Experimentella förfaranden: mätning av fluorescensinducerad effekt av Kautsky-klorofyl; PAM (pulsmodulering)Fluorescentsläckningsdynamikmätning; OJIP snabb fluorescensdynamisk mätning; QA – Reoxidationsdynamik S-tillståndsomvandling; Snabb fluorescensinduktion av klorofyl

• Fluorescensparameter:

uPAMDynamisk mätning av fluorescerande släckning: mätning av dynamisk kurva av fluorescerande släckning, kan beräknas F₀Fm, Fv och F₀’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRÖver 50 klorofylfluorescerande parametrar;

uOJIPSnabb fluorescensdynamisk mätning: Mät OJIP-snabb fluorescensdynamisk kurva, kan beräknas F₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀FV och F₀Fv / Fm, M0, Område, Fix Area, SM, SS, N, Phi_P₀och Psi_₀och Phi_E₀och Phi_D₀Phi_Pav, ABS/RC och TR₀/ RCoch ET₀/ RCoch DI₀/ RCÖver 20 relevanta parametrar

uKvalitetskontrollQA-reoxidationskinetik: mätning av QA-reoxidationskinetiska kurvor för att anpassa amplituden (A1, A2, A3) och tidskonstanterna (T1, T2, T3) i QA-reoxidationsprocessen för snabb, mellanfas och långsam fas.

uSS-tillståndstest: mätning av fluoresceringsdämpningskurvan i S-tillståndstestet för att passa beräkningen av inaktivt ljussystem II (PSII)_XAntal reaktionscenter

uFlash fluorescensinduktion (FFL, endast snabb version): används för att beräkna effektivt antenntområde, antennanslutning osv.

uAnvändaranpassade protokollfunktioner för PSII-antennheterogenitet PSIIαoch PSIIβAnalys, PSII effektiv antenn snittområde (sPSIIMätning av andra parametrar (valfri anpassningsfunktion)

uKvalitetskontrollReoxidationsdynamiska kurvor ochS-tillståndstestFluorescentdämpningskurva (Li，2010）

·Tidsupplösning (provtagningsfrekvens): högkänslig detektor med 4 µs i standardversionen och 1 µs i snabbversionen

·Minimumsgräns: 100ng Chla/L i standardversionen, 1μg Chla/L i snabbversionen

·Kontrollenhet: Färgpekskärm för realtidsvisning av fluorescerande kurvor

·Mätningsrum:

ellerMät blixt: 623nm rött orange ljus och 460nm blått ljus, blixttid 2-5µs

ellerEnkel omgång mättad blixt: maximal ljusstyrka 170000 µmol (fotoner) / m².s, blixttid 20–50 µs

ellerKontinuerligt fotokemiskt ljus: maximal ljusstyrka 3500 µmol (fotoner) / m².s

ellerFluorescensdetektor: PIN-fotodioder

oe.Kr.Omvandlare: 16bit

ellerProv provrör: bottenområde 10 x 10mm, volym 4ml

• Anpassad mätkammare (tillval): Kan anpassas för att mäta ljus, mättad blixt och fotokemisk ljusfärg (blått, blått, amber osv.) och detektionsband (ChlA, ChlB)

• Infraröd ljuskälla (tillval): för mätning av F₀Våglängd 730 nm

·Syremätningsmodul (valfritt): mätning av syreutsläppning från alger

·Temperaturkontroll (tillval): TR 6000-temperaturregulator, temperaturområde 5–60 °C, precision 0,1 °C

• Elektromagnetisk blandning (tillval): används för blandning av prover för att förhindra att provet utfälls, kan regleras manuellt eller automatiskt med programvara

• Kommunikationsgränssnitt: RS232 seriell port / USB

FluorWin ärProgramvara: Definiera eller skapa experiment, inställningar för ljuskällans kontroll, datautgång, analysbearbetning och diagramvisning

Typiska tillämpningar:

1. Wang Qiang, en forskare vid Institutet för vattenbiologi vid China Academy of Sciences, använde FL3500 chlorofluorometer (modell före FL6000) och TL växtvärmefrigörande system för att visa att nitritstyrning först påverkade Synechocystis sp. PCC 6803 PSII-receptorsidan (Zhan X, et al, 2017). Studier av denna djupgående mekanism av fotosyntes kräver ofta att båda instrumenten fungerar tillsammans.

2.Pan Ruang Liang, en forskare vid Xinjiang Institute of Ecology and Geography, och hans ämnesgrupp använde FL3500 chlorofluorometer (modell före FL6000) för att genomföra en djupgående toxicologisk studie av tungmetaller, salt, giftiga föreningar, herbicider, bekämpningsmedel, antibiotika och andra olika skadliga ämnen för alger i miljön. Genom FL3500:s unika högupplösta OJIP-snabba fluorescensdynamiska mätningar, QA-redoxideringsdynamik, S-tillståndsomvandlingar och andra klorofluorescensmätningsprogram avslöjas de toxiska mekanismerna för skador på algfotosyntesystem och deras ekologiska effekter i olika koncentrationer och behandlingstider. För närvarande har Pan Liang-gruppen använt FL3500 (före FL6000-modellen) för att publicera mer än tjugo högnivåartiklar i internationella SCI-tidskrifter och inhemska kärntidskrifter.

Ursprung: Tjeckien

Referenser:

1. Manaa A, m.fl. 2019. Saltstolerans för quinoa (Quinoa från ChenopodiumWilld) som bedömts av kloroplastultrastruktur och fotosyntetisk prestanda. Miljö- och experimentellbotanik 162: 103-114

2. Yu Z, m.fl. 2019. Känsligheten hos Chlamydomonas reinhardtii för kadmiumstress är förknippad med fototaxis. Miljövetenskap: Processer och påverkan 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Molekylära mekanismer för temperaturacklimation och anpassning i marina diatomer. ISME-tidskriften, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, m.fl. 2019. Lösning av nödvändig cyanobakterieutrofisering genom bioteknik. Tillämpad vetenskap 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Reglering av PSII-funktionen iCyanothecesp. ATCC 51142 under en ljus-mörk cykel. Fotosyntesforskning 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019. Karakterisera effekten av Poast påav Chlorella vulgarisen icke-målorganism. Kemosfär 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Thylakoid proteom modulation i ärtväxter som odlas vid olika bestrålningar: kvantitativ proteomisk profilering i en ickeModellorganism med hjälp av transkriptomisk dataintegration. Växttidningen 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Klorofyllfluorescensinduktion och relaxationssystem för kontinuerlig övervakning av fotosyntetisk kapacitet i fotobioreaktorer. Det är Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulering av klorofyllfluorescens ökning och förfall kinetik, och P700-relaterade absorbansförändringar genom att använda en regelbaserad kinetisk Monte-Carlo-metod. Fotosyntesforskning. DOI: 10.1007 / s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY krävs för att förebygga fotoskador på fotosystem II i en PsbM-bristande mutant avSynekocystsp. PCC 6803. Fotosyntetika, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Stam specifika skillnader i hastigheter av Photosystem II reparation i picocyanobacteria korrelerar med skillnader i FtsH proteinnivåer och isoform uttrycksmönster. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Transkriptomiska svar av den marina cyanobakterienProchlorococcusVirala lysprodukter. Miljömikrobiologi, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Antenn proton känslighet bestämmer fotosyntetisk ljus skördstrategi, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493